Super User

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Animateurs :

Ynuk Bossé, PhD - Professeur agrégé, Université Laval 
Institut Universitaire de Cardiologie et de Pneumologie de Québec (IUCPQ)

Fares Gouzi, MD, PhD - Associate Professor
CHU de Montpellier - Physiologie Clinique - Phymedexp INSERM U1046 CNRS UMR9214 - Montpellier University

Au terme de cette présentation, le participant sera en mesure de: 

  • Réviser les tests traditionnellement effectués en clinique afin de mesurer les volumes pulmonaires, les fonctions respiratoires ainsi que la capacité de diffusion pulmonaire;
  • Expliquer le mode de fonctionnement et l’utilité diagnostique de technologies émergentes en physiologie respiratoire ainsi que d’expliquer leur complémentarité avec les tests traditionnels;
  • Comprendre le potentiel des tests en développement avec les technologies émergentes et l’importance de continuer la recherche en physiologie respiratoire.

Cet atelier débutera par une révision des outils conventionnels utilisés en clinique respiratoire, comme la spirométrie, la pléthysmographie ainsi que la capacité de diffusion au monoxyde de carbone. Ensuite, de nouvelles technologies qui font présentement leur marque en clinique respiratoire seront introduites, comme la technique des oscillations forcées et les techniques permettant de quantifier ou visualiser la distribution de la ventilation. Finalement, des recherches actuelles sur le développement d’un test non-invasif qui permettrait de suivre au cours du temps le remodelage des voies respiratoires à l’aide de la technique des oscillations forcées seront présentées à titre d’exemple du potentiel grandissant de ces nouvelles technologies.

Animateurs :

François Maltais, MD, FRCPC, Pneumologue - Institut Universitaire de cardiologie et de pneumologie de Québec
Professeur titulaire - Université Laval Éric Nadreau, M.Sc., ACSM RCEP - Professionnel de recherche / Physiologiste d'exercice
Centre de recherche de l'Institut universitaire de Cardiologie et de Pneumologie de Québec

Au terme de cette présentation, le participant sera en mesure de:

  • Revoir les principales modalités d'épreuve d'effort en laboratoire et sur terrain utilisées dans la BPCO;
  • Définir les avantages et inconvénients des différentes modalités d'épreuve d'effort;
  • Procéder à l'administration d'une modalité d'effort en laboratoire et d'une modalité sur terrain.

Il existe de nombreux moyens pour déterminer la capacité fonctionnelle chez un patient souffrant de BPCO. Afin de pouvoir choisir le bon test pour le bon patient, il est important de connaître les informations que nous génère l'épreuve d'effort et comment celles-ci aideront le clinicien à mieux connaître et à mieux traiter ses patients. Dépendamment des moyens techniques, environnementaux, de ressources humaines et de temps, le choix de l'épreuve est très différent. Ce choix influence grandement les informations et valeurs qui ressortent de l'épreuve. Suite à l'épreuve d'effort, il est important de maximiser l'information qui en ressort ainsi qu'optimiser son application au traitement du patient souffrant de BPCO.

Animateurs :

Véronique Pépin, Ph.D. Associate professor, Dept. of Exercise Science Concordia University
Chercheur, Axe maladies chroniques - Centre de recherche de l'Hôpital Sacré-Coeur de Montréal

Mohamed Ridha CHARFI Professeur de Pneumologie à la Faculté de Médecine de Tunis, Tunisie
Master de Physiologie et de Physiopathologie respiratoires - Chef de service de Pneumologie Allergologie-EFR à l'Hôpital des FSI La Marsa, Tunisie

Au terme de cette présentation, le participant sera en mesure de:

  • Citer les indications d'une spirométrie simple (courbe débit/volume, Piko 6, débimètre de pointe);
  • Lister les principales conditions de bonne réalisation d'une spirométrie et énumérer les paramètres ventilatoires mesurables;
  • Définir les troubles ventilatoires observés à la spirométrie avec courbe/volume.

Cet atelier a pour but de discuter le principe, les indications, les règles de bonnes pratiques et l'interprétation des mesures des débits et des volumes respiratoires qu'un pneumologue peut réaliser dans son cabinet ou sa consultation, quand il est loin d'un centre d'EFR. Il utilisera un matériel portatif / Pneumotachographe portatif, Spiromètre à turbine, Spiromètre électronique (/ Piko 6) ou débimètre de pointe.

Longtemps considérée  comme  une  cellule  «  mono-tâche  »  de la réponse immunitaire innée spécialisée dans l’élimination des pathogènes, le polynucléaire neutrophile tend aujourd’hui à être repositionné au cœur des processus d’immunorégulation dans la muqueuse pulmonaire.

En utilisant un modèle d’infection respiratoire invasif à la bactérie Streptococcus pneumoniae (le pneumocoque), nous mettons en évidence un rôle clé du neutrophile dans la produc- tion d’interleukine-17 par une sous-population de lymphocytes T γδ résidente du parenchyme pulmonaire. Le neutrophile exerce cette fonction via la sécrétion d’IL-1β de façon dépendante de l’inflamma- some nLRP3. D’un point de vue mécanistique, le fonctionnement du complexe inflammasome NLRP3 au sein des neutrophiles repose sur 1) la sécrétion de TnF-α par les macrophages alvéolaires et 2) la toxine bactérienne pneumolysine pour son activation. De façon intéressante, ce mécanisme est transposable sur des neutrophiles humains.

Notre travail révèle donc la dynamique cellulaire et moléculaire d’activation des lymphocytes T γδ producteurs d’IL-17 et met en évidence pour la première fois l’existence d’un inflammasome NLRP3 fonctionnel au sein des neutrophiles pulmonaires. cet axe immunitaire régule ainsi le développement de la réponse immune protectrice de l’hôte  au cours des infections respiratoires bactériennes.

La famille des Paramyxoviridae contient plusieurs virus, incluant le virus respiratoire syncytial (RSV), causant des maladies respiratoires sévères pour lesquelles les stratégies thérapeutiques et vaccinales restent très limitées, voire inexistantes.

Le développement de résistances aux molécules ciblant les protéines virales pouvant diminuer l’efficacité des traitements à long terme, une alternative intéressante consiste à cibler les protéines de l’hôte impliquées dans les interactions hôte/virus qui contrôlent soit la réplication virale, soit la réponse autonome antivirale ou la réponse proinflammatoire. cependant, les mécanismes d’interaction des Paramyxovirus avec les cellules de l’hôte, particulièrement les cellules épithéliales, restent encore largement inconnus. Nos recherches ont permis d’identifier plusieurs protéines de l’hôte qui sont impliquées dans la régulation de la réponse antivirale dans les cellules épithéliales des voies aériennes. Plus particulièrement nous nous sommes intéressés aux récepteurs cytoplasmiques de la famille des récepteurs de type RIg- I, RIg-I et MDA5, et à leur contribution respective à la détection des Paramyxovirus dans les cellules épithéliales. nous avons également identifié des enzymes de type NADPH oxydase, NOX2 et DUOX2, dont l’activité productrice de dérivés actifs de l’oxygène contribue à la régulation de la production de cytokines antivirales et proinflammatoires.

Nos études permettent non seulement une meilleure compréhension des mécanismes impliquant des protéines cellulaires dans le développement d’une réponse antivirale autonome dans l’infection à Paramyxovirus respiratoires, mais ouvrent également de nouvelles options dans le contrôle thérapeutique de cette réponse.

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